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Mostrando 6 resultados para "inmunocromatografía de flujo lateral"

inmunocromatografía de flujo lateral

Técnica serológica que combina un sistema integral de análisis o dispositivo, basado en anticuerpos inmovilizados en una única tira de membrana que posee dos zonas (de conjugado y de captura) y permite la determinación rápida (5-15 minutos) de la presencia o ausencia de un patógeno o sus metabolitos o incluso de diversos analitos, como de dos aislados del mismo virus o de diferentes. Los dispositivos más utilizados en Fitopatología están compuestos por tiras reactivas inmunocromatográficas de nitrocelulosa o éster de celulosa. Para realizar el análisis, se añade una gota de extracto de la muestra o de una suspensión de células del microorganismo por un orificio redondo en la denominada zona de conjugado, mezclada con anticuerpos específicos del patógeno a detectar pero conjugados usualmente con nanopartículas de carbón coloreadas. Si la muestra contiene el antígeno problema, este se unirá a los anticuerpos conjugados formando un complejo que migrará a través de la membrana. Si no, migrarán separados el anticuerpo conjugado y la muestra sin antígeno, sin unirse. En la zona de captura del dispositivo (dos líneas separadas de anticuerpos) se encuentran fijados en una primera línea anticuerpos específicos frente a otro epítopo del antígeno problema. Al llegar la muestra a esta primera línea, los complejos formados por la unión del antígeno (muestra) con el conjugado quedarán retenidos y la línea se coloreará en este caso en rosa, negro o azul, según el color del delator (muestra positiva). En el caso contrario, si las muestras son negativas, aparecerá una segunda línea donde los conjugados sin fijarse al antígeno inexistente, quedarán retenidos por anticuerpos anti la especie animal utilizada en la prueba. Así pues, la aparición de dos líneas (positivo y control) indicarán la presencia del patógeno analizado y la aparición de una única línea de control indicará la ausencia del patógeno o su presencia en concentración inferior al límite de detección de la técnica y sus reactivos. Esta evaluación visual permite el análisis cualitativo y semicuantitativo. Mediante un lector especial, se pueden analizar de forma cuantitativa las tiras reactivas. Además de la rapidez de los resultados y la sencilla manipulación, los ensayos de flujo lateral tienen la ventaja de poder ser utilizadas en condiciones de campo por personal no especializado a un coste económico relativamente bajo.

nanoformulación

Aplicación de la nanotecnología en la formulación de productos químicos o plaguicidas con el objetivo de mejorar su eficacia terapéutica, solubilidad, biodisponibilidad y reducir su fitotoxicidad. Supone el uso de nanopartículas (menores de 100 nm), generalmente en emulsiones microencapsuladas o formuladas de manera que se optimice su adsorción, bioseguridad y la protección mediambiental. En la protección de cultivos se refiere al uso de nanomateriales para mejorar la eficiencia de plaguicidas mediante la encapsulación de ingredientes activos en nanopartículas y otros variados usos (biosensores, electrohilado, inmunocromatografía de flujo lateral, y oro coloidal, entre otros).

cromatografía

Técnica de separación de componentes de estructura similar, que se basa en sus diferencias de reparto entre una fase estacionaria (sólida o líquida) y una fase móvil (líquida o gaseosa). La separación puede realizarse utilizando distintas propiedades de los compuestos, como son la forma y tamaño, volatilidad, fuerza iónica, etc. Se han desarrollado distintos tipos (en papel, en capa fina, de intercambio iónico, de gases, de líquidos, líquida de alta resolución y de afinidad;

inmunocromatografía

Técnica que utiliza anticuerpos tras la separación cromatográfica de los componentes de la muestra, nativa o desnaturalizada, en un gel o membrana generalmente de nitrocelulosa.

métodos directos de preparación de muestras

En Fitopatología, se consideran fáciles de usar y normalmente sencillos de ejecutar, porque no exigen la realización de extractos, purificación de ácidos nucleicos, o tratamiento complejo de las muestras vegetales o de vectores, en su procesado antes del análisis de las mismas mediante técnicas de cultivo o aislamiento, serológicas, de hibridación o moleculares de amplificación.

Sociedad Española de Fitopatología
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