Diccionario

Aquel cuya temperatura óptima de crecimiento se encuentra entre 20 y 45 °C.

Ordenación radial del parénquima clorofílico, respecto a los haces conductores, distinguiéndose una vaina del haz, a menudo de naturaleza colenquimática, rodeada a su vez por células del mesófilo. En las plantas C-4 los cloroplastos de ambos tipos de células presentan diferencias fisiológicas y, en ocasiones, morfológicas, y en las plantas productoras de malonato los cloroplastos del haz carecen de grana (cloroplastos agranales); esta estructura anatómica está relacionada con la existencia de un ciclo complementario de fijación del CO2.

Técnica de imagen utilizada en Fitopatología. La excitación de una hoja con luz ultravioleta (320-400 nm) induce cuatro bandas de fluorescencia características con picos cercanos a 440 nm (azul, F440), 520 nm (verde, F520), 690 nm (rojo, F690) y 740 nm (rojo lejano, F740), cuyas correspondientes imágenes pueden ser captadas con el objetivo de analizar el estrés biótico asociado a la infección por patógenos. Por otro lado, la biosíntesis de muchos compuestos fenólicos, principalmente de la ruta de los fenilpropanoides, se activa durante el estrés vegetal, como parte de los mecanismos de defensa de las plantas. Sometidos a luz UV, parte de estos compuestos emiten principalmente fluorescencia verde y azul. Este es el caso de los ácidos hidroxicinámicos como ferúlico o clorogénico. La infección viral sistémica de algunos virus, como del tobamovirus del moteado atenuado del pimiento (Pepper mild mottle virus-PMMoV) en plantas de Nicotiana benthamiana produce alteraciones en la emisión de F440 y F520, ligadas a altos niveles de ácido clorogénico. En cambio, en el caso de infección por la bacteria Dickeya dadantii es F520 el parámetro más sensible para un diagnóstico temprano. Su emisión se localiza inicialmente en el apoplasto y posteriormente en las células del mesófilo. Ensayos metabolómicos en este sistema, sugieren o apuntan al ácido ferúlico y la escopoletina como los probables emisores de fluorescencia verde.

1. La reacción de hipersensibilidad (HR, acrónimo del inglés Hypersensitive Reaction), se debe a una respuesta rápida de defensa de la planta a patógenos incompatibles. No debe ser confundida con la patogenicidad, y puede ocurrir en las combinaciones patógeno-huésped o anfitrión que muestran incompatibilidad, como: i) patógeno virulento-planta no huésped o no anfitriona; ii) patógeno virulento-cultivar resistente; y iii) cepa o mutante no virulento-cultivar sensible. Es la cualidad de algunas plantas extremadamente sensibles, que generan una reacción local, poco tiempo después de la introducción natural o la inoculación artificial de un patógeno y que, debido a la muerte de las células alrededor de los puntos de entrada, impide el desarrollo posterior del patógeno invasor y la aparición de nuevos síntomas. La prueba de hipersensibilidad se utiliza ampliamente para el diagnóstico de bacterias fitopatógenas, ya que la mayoría de las especies fitopatógenas de los géneros Erwinia, Pseudomonas y Xanthomonas, entre otros, inducen HR visible en ciertas especies de plantas en las que no causan enfermedades. Por tanto, si una suspensión de un cultivo puro es capaz de provocar esta reacción será un indicio de que la bacteria en cuestión es fitopatógena. La prueba se realiza mediante infiltración de una suspensión bacteriana densa (107-108 ufc/mL) en el mesófilo de hojas bien desarrolladas, generalmente de tabaco, pero también en tomate, geranio, o vainas de judía o frijol. La reacción es rápida y en menos de 48 h aparece un desecamiento brusco que se observa exclusivamente en la zona infiltrada y que no avanza con el tiempo. También se utiliza, como prueba de diagnóstico en virología mediante inoculación mecánica de plantas indicadoras herbáceas como algunas solanáceas (mayoritariamente del género Nicotiana), quenopodiáceas, cucurbitáceas, etc. La inoculación mecánica de un extracto de la planta infectada por virus, generará en algunos huéspedes lesiones locales, normalmente necróticas, aunque también pueden ser cloróticas, como manifestación de la reacción de hipersensibilidad. 2. Respuesta inmune inflamatoria en mamíferos, frecuente en conejos frente a ciertos inmunógenos ante una segunda exposición a un antígeno ya inyectado durante un protocolo de inmunización.

Tejido conductor en el mesófilo de las hojas de las plantas con los elementos de sostén asociados, claramente visible en superficie o al trasluz. Cuando los nervios son ramificados, como en muchas dicotiledóneas, el nervio medio o principal, en prolongación con el peciolo, es más fuerte que los demás, partiendo de él nervios laterales de los que, a su vez, parten otros de orden superior y menor tamaño, según definición del Diccionario de Ciencias Hortícolas de la SECH. El conjunto de nervios de una hoja se denomina nervadura.

Célula a la que se ha eliminado totalmente la pared celular mediante métodos enzimáticos o mecánicos. Los protoplastos aislados, al no tener pared necesitan mantenerse en un medio no plasmolítico adecuado cuyo potencial osmótico requiere estar cuidadosamente ajustado para que los protoplastos no lisen. Se han obtenido de gran variedad de tejidos como meristemos, mesófilo de hojas, órganos de reproducción, coleoptilos, raíces, cotiledones, cultivo de callos, etc. Los protoplastos se pueden cultivar in vitro para que regeneren una nueva pared celular, y posteriormente, fusionarlos con otros y mantenerlos en cultivo hasta la regeneración de plantas capaces de florecer. Se han empleado como sistema modelo para inocular virus de plantas y estudiar la replicación viral, en su mayor parte a partir del mesófilo de hojas de tabaco, pues además de ser susceptible a una gran variedad de virus, las hojas de esta planta contienen gran número de células parenquimáticas. Los protoplastos son capaces de fusionarse y su fusión in vitro con la subsiguiente regeneración de plantas híbridas, incluso interespecíficas, constituye un sistema para introducir una mayor diversidad aprovechable en mejora vegetal.

1. Respuesta rápida de defensa de la planta a patógenos incompatibles. No debe ser confundida con la reacción de patogenicidad, que tarda más en aparecer. Puede ocurrir en las combinaciones patógeno-huésped que muestran incompatibilidad, como patógeno virulento-planta no huésped, patógeno virulento-cultivar resistente y cepa o mutante no patogénico-cultivar sensible. La mayoría de las especies bacterianas de los géneros Erwinia, Pseudomonas, Xanthomonas y otras bacterias fitopatógenas, inducen reacción hipersensible visible en algunas plantas en las que no causan enfermedades. Por lo tanto, si un cultivo bacteriano es capaz de generar esta reacción, constituirá un indicio de su posible fitopatogenicidad. La prueba de la hipersensibilidad se realiza por infiltración de una suspensión bacteriana de unas 107-109 ufc/mL en el mesófilo de hojas bien desarrolladas, habitualmente de tabaco, pero también en tomate, geranio o vainas de alubia, judía, frijol, fríjol o poroto. La reacción es rápida y en menos de 48 h aparece un desecamiento brusco que se observa exclusivamente en la zona infiltrada y que no avanza con el tiempo, por lo que se utiliza como prueba diagnóstica en ciertas especies. El aumento de la sensibilidad, como en la muerte rápida de células vegetales localizadas y muerte tisular en el punto de ataque, es también típico en la reacción de un hongo de la roya u otro parásito obligado, por lo que la infección no se propaga. También se observa en virus que generan lesiones locales por respuesta necrótica en hojas de plantas indicadoras herbáceas inoculadas mecánicamente. 2. La respuesta frente a los virus del mosaico del tabaco (Tobacco mosaic virus-TMV) y del mosaico del tomate (Tomato mosaic virus-ToMV), que son capaces de infectar Nicotiana tabacum var. ‘Samsun’. Ambos producen un mosaico sistémico intenso. Sin embargo, inoculados sobre N. glutinosa y N. tabacum var. ‘Xanthi’, producen una reacción local consistente en lesiones necróticas a temperaturas inferiores a 28 °C, pudiendo aparecer infecciones sistémicas a temperaturas más altas. 3. Respuesta inmune inflamatoria en mamíferos utilizados como animales experimentales de laboratorio para la producción de anticuerpos, en la segunda dosis de inmunización o exposición a un antígeno. El shock anafiláctico o reacción alérgica generalizada, constituye su máxima expresión y puede causar la muerte del animal inmunizado.

Tipo de transmisión no circulante, frecuente en pulgones y ciertos virus, en la que el agente patógeno es adquirido y transmitido por un vector tras un corto período de tiempo de alimentación o prueba en una planta infectada (segundos-minutos), y es retenido por el vector en la cutícula del estilete, también por un corto período de tiempo (horas). El agente patógeno puede pasar del estilete o del esófago (de hecho, se pueden detectar patógenos de plantas en insectos no vectores), pero no son retenidos, ni se multiplica el patógeno en el vector, ni pasa a su descendencia. El patógeno se adquiere-inocula, en el caso de pulgones, por un mecanismo de ingestión-salivación en las células de la epidermis o mesófilo de las plantas. No posee período de latencia. Generalmente, un período de ayuno previo favorece su transmisión, y en la ecdisis o muda se pierde el patógeno. Existe una baja especificidad patógeno-vector y disminuye drásticamente la transmisión tras una inoculación secuencial realizada por el mismo individuo vector, debido a su bajo período de retención. Es el tipo de transmisión de los géneros de virus: Alfamovirus, Bromovirus, Carlavirus, Cucumovirus, Vitivirus, Fabavirus, Macluravirus, y Potyvirus, siendo este último el grupo de virus de plantas más numeroso, al cual pertenecen virus de importancia económica como el virus Y de la patata o papa (Potato virus Y-PVY) o el virus de la sharka o viruela del ciruelo (Potyvirus plumpoxi, Plum pox virus-PPV). Estos potivirus requieren la presencia de un factor asistente de la transmisión, componente ayudante o HC. No obstante, la existencia de mutantes de potivirus no transmisibles por pulgón, aunque produzcan dicho factor funcionalmente activo, demuestra la implicación de otros factores en el proceso, entre ellos una región de tres aminoácidos (asparagina-alanina-glicina, DAG) en el extremo amino terminal de la cápsida. En el caso concreto de los cucumovirus (como el virus tipo del mosaico del pepino, Cucumber mosaic virus-CMV) emplea la estrategia de la proteína de la cápsida en la transmisión, mediante la cual el virión se une a la cutícula del pulgón directamente sin mediar ningún factor de transmisión.

También, planta que no presenta adaptaciones a condiciones hídricas extremas. En sentido más amplio, se utiliza también para referirse a las plantas sin adaptaciones a hábitats extremos.