Diccionario

1. Alteración de la pureza de alguna cosa, sustancia, alimento, agua, aire, suelo, sustrato, medio de cultivo, muestra, etc. 2. Presencia indeseada de partículas u organismos extraños sobre una superficie (bancada, guantes, manos, pelo, ropa, etc.) o dentro de otros materiales, como en una muestra, medio de cultivo, tampón, ambiente, preparaciones, cultivo celular o cultivo de microorganismos. 3. Presencia de plagas, en sentido amplio, u otros artículos reglamentados en un producto, lugar de almacenamiento, medio de transporte o contenedor, sin que constituya una infestación o infección, según la terminología de la FAO, 2022. Glosario de términos fitosanitarios NIMF nº 5.

La que se produce entre muestras y por tanto puede dar lugar a falsos positivos.

Presencia indeseable de sustancias radiactivas en seres vivos, muestras, objetos o en el medio ambiente. Se denomina contaminación superficial (si afecta a la superficie de los objetos), contaminación externa (piel de las personas) o contaminación interna (órganos internos de personas).

1. Procedimiento de eliminación o reducción de agentes biológicos o toxinas a un nivel seguro con respecto a la transmisión de infección u otros efectos adversos. Así se aplica a material peligroso como radioisótopos (contaminación radiactiva), organismos patógenos o muestras infectadas con organismos de cuarentena, geles teñidos con bromuro de etidio, etc., para permitir el acceso a determinada zona del laboratorio o invernadero o la reutilización de un objeto sin tener que recurrir al uso de vestimenta protectora o tomar precauciones especiales. 2. (depollution). Proceso que da por resultado la eliminación de una sustancia contaminante. El término se utiliza frecuentemente de forma general para incluir a todos los aspectos de los procesos de tratamiento biológico de residuos aerobios y anaerobios.

Sigla en italiano de Associazione Italiana per la Protezione delle Piante, en español Asociación Italiana para la Protección Vegetal. Se fundó en Milán en 1992 como fusión de parte de la Società Italiana di Fitiatria (SIF) (Sociedad Italiana de Fitiatría), fundada en Pavía en 1952 y la Associazione Fitopatologica Italiana (AFI) (Asociación Fitopatológica Italiana), constituida en Bari en 1973. Asociación sin ánimo de lucro que trata de estrechar colaboraciones entre el mundo de la investigación y el aplicado y promueve el conocimiento del medio y los métodos de defensa de las plantas frente a factores adversos, la contaminación ambiental y las técnicas productivas inadecuadas.

Separación geográfica o física entre un campo de producción de semillas y otra parcela de la misma especie, para i) evitar la mezcla mecánica con otras semillas; ii) la contaminación por polen de otro cultivar, o iii) la infección por patógenos que pudieran transmitirse por semilla o afectar negativamente a la producción de semillas.

Tras la fecundación el primordio seminal se transforma en una semilla generando las cubiertas seminales externas protectoras, el tejido de reserva o albumen y el embrión. El albumen, generalmente está formado por hidratos de carbono, lípidos y proteínas, constituye la sustancia de reserva básica de la semilla y está presente en la práctica totalidad de las semillas. Es necesario para que el embrión comience a desarrollarse en la germinación. Algunos agentes patógenos pueden estar presentes en el mismo como una contaminación externa y ser transportados pasivamente por la semilla, sin que haya una verdadera transmisión por semilla.

Técnica de amplificación isotérmica de ácidos nucleicos que no precisa de ciclos de temperaturas para la desnaturalización de las hebras de ADN, ya que, debido a la acción de enzimas de restricción que generan mellas en el ADN, este proceso se realiza de forma enzimática. Es una modificación de la PCR o RT-PCR simple convencional que mejora su rendimiento final. Se basa en la capacidad de una ADN polimerasa modificada, para desplazar una hebra monocatenaria resultante de un corte en una región específica y a partir de esta hebra desplazada, iniciar la replicación o amplificación de ese ADN diana. Con este procedimiento, las hebras desplazadas sirven como molde para los nuevos ciclos de amplificación, generando por un lado que los productos de amplificación se multipliquen por más del doble al final de cada ciclo de amplificación y por otro, que se observe un incremento en la velocidad de reacción, sensibilidad y especificidad de la técnica respecto a la PCR o RT-PCR simple convencional. Se puede llevar a cabo la replicación, amplificación o la secuenciación de un ADN mediante una ADN polimerasa del tipo fago φ29 o 29 (Phi29). Se realiza en un único tubo, lo que contribuye a evitar contaminaciones, en plataformas convencionales de la PCR cuantitativa, con un mayor número y concentración de cebadores. Incrementa la eficiencia y sensibilidad de la PCR, y se efectúa aumentando la velocidad final de la reacción.

Aquellos que se realizan periódicamente en la industria alimentaria, hospitales, centros sanitarios o laboratorios de diagnóstico para determinar el recuento de microorganismos indicadores como los aerobios, enterobacterias, mohos o levaduras que dan una idea general de la contaminación presente. Estos análisis son útiles para garantizar que los procesos de limpieza y desinfección establecidos se están cumpliendo y están siendo eficaces frente a bacterias, hongos y virus. Actualmente también incluyen el análisis de coronavirus en superficie.

El ARN es un material extremadamente sensible a la degradación por ribonucleasas y debe manejarse con cuidado durante los pasos de aislamiento de ácidos nucleicos. Este es el paso más crítico para preparar con éxito ADNc y realizar una reacción de PCR en tiempo real eficiente y reproducible. Pipetas, puntas, las manos del operador o incluso la propia bancada del laboratorio, pueden ser foco de ribonucleasas. Una vez extraído el ARN, se debe evaluar su pureza, frecuentemente por espectrofotometría. Además de la concentración, la relación de absorbancia entre 260 y 280 nm (A260/A280), debe estar en el rango de 1,8-2,0. Si es inferior, puede sugerir la contaminación de la muestra por fenol, proteínas o por material vegetal.

Libre de microorganismos capaces de causar infección o contaminación.

Bolsa de plástico de diferentes tamaños para preparar extractos del material vegetal allí introducido tras añadir un tampón de extracción conveniente. El sistema evita contaminación cruzada entre muestras que pueden ser recolectadas en campo en la misma bolsa, optimiza la extracción para el posterior análisis y permite el filtrado grosero gracias a estar provistas de una malla fina. Pueden ser utilizadas en homogeneizadores de rodillos semiautomáticos. Las hay con malla gruesa para facilitar el extracto de material leñoso al ser golpeado a través de la bolsa con un martillo de maza plástica o elemento duro. El dilacerado o extracto ligero también puede realizarse mediante suave presión sobre la bolsa introducida en aparatos específicos que admiten varias bolsas simultáneamente.

Aparato en el que un flujo, vertical u horizontal, de aire filtrado permite mantener condiciones de asepsia en la zona de trabajo. Equipada con luz ultravioleta, la cabina ofrece protección del material manipulado frente a la contaminación externa, pero no garantiza la protección total del producto. El aire pasa de manera forzada primero por un prefiltro y posteriormente a través de un filtro de seguridad, donde quedan retenidas las partículas mayores de 0,3 m. En las cabinas de seguridad biológica de clase II la abertura para trabajar el operario es solo parcial y existe una corriente de aire descendente de flujo laminar uniforme y unidireccional. Este flujo protege al material manipulado mientras que un flujo exterior pasa a través de un filtro HEPA absoluto y protege también al personal que lo manipula evitando además la salida de cualquier partícula al exterior. Por ello, estas cabinas son necesarias para la manipulación de organismos de cuarentena que afectan a las plantas. Existen también cabinas de seguridad biológica de tipo III, que van herméticamente cerradas y se usan en medicina para manipular agentes biológicos de los grupos de riesgo 3 y 4.

Equipo diseñado para proteger al trabajador, la atmósfera del laboratorio y los materiales de trabajo de la exposición a las salpicaduras y aerosoles infecciosos que pueden generarse al manipular material que contiene agentes infecciosos, como cultivos, soluciones madre y muestras. Generalmente se producen aerosoles en cualquier actividad que transmita energía a un material líquido o semilíquido, por ejemplo, al agitar, verter a otro recipiente, remover o verter sobre una superficie o sobre otro líquido. Las actividades como la siembra de placas de medio sólido con agar, la inoculación de frascos de cultivo celular con pipeta, el uso de pipetas múltiples para dispensar suspensiones líquidas de agentes infecciosos en placas de microcultivo, la homogeneización y la agitación vertical de material infeccioso, y la centrifugación de líquidos infecciosos, las inoculaciones o el trabajo con animales o plantas, pueden generar aerosoles. Las partículas de aerosol de menos de cinco μm de diámetro y las gotículas de cinco a 100 μm de diámetro no son visibles a simple vista. El operario no suele percatarse de que se están produciendo esas partículas, que pueden ser inhaladas o provocar contaminación cruzada de los materiales que se encuentran sobre las superficies de trabajo. Las CSB, cuando se utilizan debidamente, han demostrado ser sumamente eficaces para reducir las infecciones en el laboratorio y la contaminación cruzada de cultivos por exposición a aerosoles y también protegen la atmósfera del laboratorio. Contienen un filtro HEPA (retiene el 99,97 % de las partículas de 0,3 m de diámetro y el 99,99 % de las partículas de tamaño mayor o menor), lo que garantiza que de la cámara solo sale aire exento de microorganismos. Además, se dirige hacia la superficie de trabajo aire que también ha pasado por filtros HEPA, con el fin de proteger de la contaminación los materiales de esa superficie. Las cabinas de flujo horizontal y vertical no son CSB y no deben emplearse como tales con organismos de riesgo según la legislación de la Unión Europea.

Denominación común de la enfermedad causada por el virus del cascabeleo del tabaco (Tobacco rattle virus-TRV), familia Virgaviridae, género Tobravirus, especie Tobravirus tabaci, ampliamente distribuido en diferentes zonas geográficas. Posee una amplia gama de huéspedes o anfitriones que abarca tanto monocotiledóneas como dicotiledóneas. En patata o papa, produce arcos necróticos profundos en la carne del tubérculo, que pueden transparentarse a través de la piel. Los síntomas foliares son infrecuentes, y consisten en un moteado severo que afecta a parte de los tallos de la mata. Es transmitido en la naturaleza por nematodos del género Trichodorus sp., la especie del vector está ligada a la raza del virus presente. La patata o papa no es un buen anfitrión, pues se presenta con frecuencia defectivo en ARN 2 y, por tanto, no encapsidado (formas NM). Estas formas no son transmisibles por nematodos, de forma que se rompe el ciclo epidemiológico. Tampoco se transmite bien a todos los tubérculos hijos, tendiendo a desaparecer en la descendencia. Por el contrario, en las variedades asintomáticas de patata o papa, el virus se replica completamente y son fuente de transmisión para los nematodos. Incluso en este caso, el vector no sobrevive el transporte en la patata de siembra y es necesario que en el campo de destino se encuentre la especie de nematodo adecuada al patotipo del virus. A pesar de esta difícil contaminación por la patata o papa de siembra, una vez presente en una parcela es casi imposible de erradicar, ya que tanto el virus como el vector son sumamente polífagos y se perpetúan en otros cultivos y malas hierbas o malezas, en las que se transmite por semilla. Presente esporádicamente en España.

Acrónimo de Centro Internacional de la Papa. Es uno de los mayores centros dedicados a la investigación científica en papa o patata, camote, batata o patata dulce, yuca y otros tubérculos o raíces andinas, con el objetivo de obtener el pleno alcance de sus capacidades alimenticias para beneficiar a los países en vías de desarrollo. Fue fundado en 1971 en Lima (Perú). Tiene centros experimentales en las alturas andinas y en San Ramón, en el oriente peruano y en Quito (Ecuador), así como una red de oficinas regionales y colaboradoras alrededor del mundo, incluyendo Asia y África. Su programa de protección de cultivos es prioritario y tiene un banco de germoplasma con unos 5.000 tipos diferentes de papa o patata silvestre o cultivada, 6.500 variedades de camote, y más de 1.300 tipos de otras raíces y tubérculos andinos provenientes de Bolivia, Ecuador y Perú. Produce semillas de papa o patata mejoradas para resistir a enfermedades, heladas y sequía y conserva una provisión de semilla sexual de cada papa, libre de contaminaciones y de fácil transporte, para ser usada en ocasión de catástrofes naturales y otras emergencias que se presenten.

La cepa microbiana se suele conservar y guardar en forma de cultivo activo en el medio de cultivo en el que ha crecido. Sin embargo, estas células no pueden permanecer indefinidamente en el mismo tubo, porque al seguir activas excretan productos tóxicos del metabolismo que se acumulan, provocando el envejecimiento y muerte celulares, por lo que es necesario transferirlas a otro tubo con medio de cultivo fresco. Este es el peor método para conseguir la estabilidad genética, puesto que al estar las células creciendo hay una alternancia de generaciones, y al cabo del tiempo las células que se están guardando serán descendientes lejanos de las células iniciales y es posible que ya no conserven algunas de sus características. Si se utiliza este método es aconsejable retardar el envejecimiento y alargar los períodos entre dos resiembras. Existen diversas estrategias, como: i) disminuir la cantidad de inóculo; ii) rebajar la proporción de algunos nutrientes en el medio de cultivo; iii) inocular en picadura los microorganismos que son anaerobios facultativos, ya que el crecimiento en presencia de oxígeno es más rápido y origina productos generalmente tóxicos; iv) almacenar los cultivos a 4-8 °C, o v) recubrir el crecimiento con una capa de aceite mineral estéril. Con ello se consigue también evitar en la medida de lo posible la desecación del medio de cultivo, que podría ser tóxico para las células al aumentar su concentración. Hay que tener en cuenta que los microorganismos muy aerobios, no se pueden guardar en tubos completamente cerrados. Otro inconveniente de la transferencia periódica es que la contaminación de los cultivos resulta más fácil al tener que manejar los tubos a lo largo del tiempo y también por la posibilidad de entrada de ácaros en los mismos.

1. Caída prematura de las hojas de una planta, por procedimientos mecánicos, enfermedad, contaminación ambiental o acción humana debida a la aplicación de sustancias químicas (defoliantes). 2. Fenómeno de la separación y caída de las hojas (filopsis), característico de los hongos causantes de chancros en el tronco y de algunas bacteriosis y virosis. La disminución de la aportación de agua y de sustancias alimenticias al sistema foliar, como consecuencia de la actividad parasitaria, favorece los procesos anatómico-fisiológicos que regulan la abscisión, es decir, la formación en la base del peciolo de un tejido hipertrófico o hiperplásico de naturaleza suberosa, lo que lleva aparejada una defoliación a destiempo, más o menos intensa.

Acción de desecar o quitar agua. Método de conservación de material vegetal o microorganismos alternativo a la liofilización ya que el metabolismo celular disminuye cuando falta el agua. Se puede lograr por diversos métodos como corriente de aire seco, material absorbente, vacío, etc., o combinación de ellos. Su aplicación está poco contrastada y suele implicar problemas de contaminación. Para material vegetal infectado por virus se ha utilizado con frecuencia el denominado método de Boss de conservación de finas tiras de material vegetal desecado paulatinamente en papel de filtro sobre un lecho de cloruro cálcico hasta desecación. También se suele utilizar la desecación en silicagel, método apropiado para microorganismos productores de esporas. El método de desecación en bolitas de alginato constituye otra opción y se trata de un procedimiento bastante eficaz: las células se encuentran en una matriz de alginato y la eliminación del agua se hace por tratamiento con soluciones hipertónicas sucesivas y posterior desecación al aire (generalmente forzado) hasta que se pierde un 70 % de su contenido en agua. Las bolitas de alginato se pueden conservar en tubos cerrados herméticamente y a temperaturas de entre 4 y 18 oC, pudiéndose mantener incluso a –80 oC debido al bajo contenido en agua de las células y la protección que suministra el soporte de alginato. Este método se utiliza también para la conservación de células vegetales.

1. Acción y efecto de desinfectar. 2. Proceso de eliminación de los microorganismos sin discriminación, excepto sus esporas, de una superficie. Entre los microorganismos a eliminar se pueden encontrar los que infectan o pueden provocar infección en una planta, material vegetal, o sobreviven en suelo o sustrato, agua, ambiente, lugar, sitio o cosa, destruyéndolos y evitando así su desarrollo. 3. Proceso químico o físico que destruye microorganismos e inactiva virus y viroides que se pueden encontrar en la superficie de material vegetal o de lugares u objetos inertes, agua, suelo o sustrato, y atmósfera confinada, para evitar su desarrollo y prevenir la posible infección. La desinfección se lleva a cabo por medio de biocidas o germicidas, sustancias químicas antimicrobianas, algunos de cuyos mecanismos de acción y resistencia son similares a los de los antibióticos. Entre los desinfectantes químicos del agua más habituales se encuentra el cloro, las cloraminas y el ozono y entre los físicos la filtración, ebullición y la irradiación ultravioleta. Para superficies se usa o ha usado alcohol, cloro o compuestos clorados, formaldehído, glutaraldehído, peróxido, yodóforos, ácido peracético, compuestos de amonio cuaternario y cloruro de benzalconio. Se ha validado la eficacia de la mezcla de etanol del 62-71 % con 0,5 % de agua oxigenada (peróxido de hidrógeno) o con 0,1 % de hipoclorito sódico, para la eliminación e inactivación incluso de virus en superficies inertes en un minuto. Para muestras vegetales es frecuente el uso de diluciones de hipoclorito o alcohol etílico, seguidas de lavado o enjuagado con agua estéril. La eficacia de la desinfección depende de varios factores, como del tipo de contaminación del material, de la calidad de la limpieza previa, de la concentración del desinfectante, del tiempo de contacto del material con el desinfectante, y de la configuración del objeto a desinfectar. 4. Ausencia de gérmenes que pueden provocar infección.

Tipo de contaminación por aparición de una señal de analito en una muestra blanco tras el análisis de una muestra con una alta concentración de analito. Suele suceder generalmente en el análisis de varias muestras de forma consecutiva.

Método de detección de agentes patógenos (transmisibles por inoculación mecánica, injerto, cuscuta o vectores), presentes en una muestra asintomática de la que se desea conocer su estado sanitario, o en aquella sintomática que se desea diagnosticar e identificar a su agente o agentes causales o asociados a los síntomas. Los ensayos biológicos más populares son la inoculación de plantas indicadoras herbáceas por inoculación mecánica o la de plantas indicadoras leñosas por injerto de inoculación. Son sensibles y frecuentemente constituyen la única forma de demostrar la patogenicidad y estimar la virulencia de agentes no cultivables. Pero precisan de instalaciones adecuadas, sofisticadas y costosas para favorecer la expresión de síntomas y evitar la contaminación exterior por vectores, y son lentos ya que precisan de días (en plantas indicadoras herbáceas) y meses o años en plantas leñosas. Hoy día están en desuso por la carencia de personal especializado, su alto coste y lentitud diagnóstica, y por la irrupción de métodos serológicos, de hibridación, amplificación molecular y de secuenciación masiva, que los van sustituyendo. No obstante, durante muchos decenios han constituido la prueba más sensible y única de conocer el estado sanitario para certificar plantas y semillas. 2. (biological test). Medida estimada de la concentración o potencia de acción de una sustancia mediante su efecto en células o tejidos vivos y en Patología vegetal muy utilizada para evaluar la virulencia. 3. (biological assay). Cualquier método, prueba o test, in vivo o in vitro, que implique experimentos en organismos vivos o sus tejidos.

Material, incluyendo vestimenta, usado para prevenir la exposición o la contaminación de una persona por sustancias químicas o biológicas. Normalmente está destinado a ser llevado o sujeto por el operario para que le proteja piel, ojos, o cuerpo en general de uno o varios riesgos que puedan amenazar su seguridad o su salud en el trabajo, así como cualquier complemento o accesorio homologado destinado a tal fin. En laboratorio son frecuentes guantes, batas desechables o recuperables, monos de trabajo desechables, mantas ignífugas, gorros desechables, gafas para evitar salpicaduras, viseras plásticas protectoras de rayos ultravioleta y salpicaduras, mascarillas o barbijos de protección respiratoria (adecuadas frente a los peligros que suponen ciertos vapores y aerosoles, humo, gases, polvo, partículas radiactivas, vapores metálicos, microorganismos potenciales patógenos de humanos, etc.), tapones acústicos o cascos auriculares atenuantes del ruido, guantes de plástico desechables y guantes de crioprotección o ignífugos, etc. En campo, para encuestas, prospecciones, toma de muestras o visita a plantaciones infectadas, además del equipo de laboratorio descrito, es conveniente el uso de chaleco identificativo con reflectantes (a evitar color amarillo o verde, por su atracción de posibles vectores), mono de trabajo, botas de goma y guantes protectores desechables encima de los de laboratorio.

1. Espacio aislado por el que es preciso pasar para entrar y salir en zonas de seguridad, ya sea para vigilar el acceso a una zona infectada o contaminada o que contiene material infectado, evitar robos, ataques o prevenir la salida de material contaminado. 2. Abertura instalada normalmente en la pared o muro de separación entre zonas limpias y sucias. Constituye una frontera que permiten las introducciones de material del exterior a la zona contaminada, evitando que la contaminación salga al exterior. Normalmente son de sobrepresión y deben poseer una diferencia de presión de 30 pascales (Pa) mínimo, para evitar la salida de aire desde la zona supuestamente contaminada al exterior.

Contaminación del aire, principalmente en áreas urbanas por ozono originado en presencia de radiación solar, y otros compuestos (óxidos de nitrógeno, monóxido de carbono (CO), metano (CH4) y compuestos orgánicos volátiles). Como resultado se observa una atmósfera de un color plomo o negro, perjudicial para la salud y las plantas que reducen su fotosíntesis y genera moteado y manchas amarillentas, negras o marrones.

Aumento de la concentración de nutrientes inorgánicos en una extensión de agua. Suele ser el resultado de la contaminación por arrastre de tierras de uso agrícola, a las que se ha aplicado un exceso de fertilizantes.

Magnitud física que caracteriza el proceso y resultado de someter organismos vivos, personas o materiales a la radiación ionizante (irradiación) que produce en el aire una radiación. Su unidad es el Roentgen (R): 1 R = 2,58 x 10-4 C/kg. Si se refiere a seres humanos, hay tres tipos de exposición: i) externa; ii) por la contaminación de la piel; y iii) interna.

Instrumento que permite la extracción automatizada de ADN o ARN de varias muestras basado en una amplia gama de kits para la extracción y el aislamiento específico de ácidos nucleicos. Frecuentemente estos aparatos se basan en la adsorción del ácido nucleico en partículas magnéticas o paramagnéticas y sistemas de pipeteado ajustable de alta precisión. Utilizan cartuchos de reactivos sellados. Suelen estar provistos de lámpara de rayos ultravioleta para la descontaminación de la cámara de muestras.

Acrónimo del inglés. En español, Agencia de investigación de alimentos y medio ambiente de Gran Bretaña. Se creó en 2009 en York, al fusionar el Central Science Laboratory (CSL) (Laboratorio científico central), la Plant Health Division (PHD)/Plant Health and Seeds Inspectorate (PHSI) (División de Sanidad Vegetal e Inspección de Sanidad Vegetal y semillas), Plant Variety Rights Office and Seeds Division (PVS) (Oficina de derechos de variedad de plantas y semillas) y el UK Government Decontamination Service (Servicio de descontaminación del Gobierno del Reino Unido). En 2015, se creó FERA Science como una entidad independiente del gobierno como una empresa conjunta entre DEFRA (Department for Environment, Food and Rural Affairs, Departamento de Medio Ambiente, Alimentación y Asuntos Rurales) y la empresa privada internacional Capita. Lógicamente, las oficinas oficiales relacionadas con la Inspección de Sanidad Vegetal, la Oficina de obtenciones vegetales y semillas, la Unidad nacional de abejas y la Inspección de Organismos genéticamente modificados (OGM), se separaron de FERA y pasaron a formar parte de la Animal and Plant Health Agency (Agencia de Sanidad Animal y Vegetal de Gran Bretaña). La actual FERA, como agencia de investigación de alimentos y medio ambiente, apoya y desarrolla una cadena alimentaria sostenible, favorece un entorno natural saludable y vigila y protege a la comunidad mundial de los riesgos biológicos y químicos.

Entidad sin ánimo de lucro, que tiene como fin primordial la formación, la promoción y el asesoramiento en Agroecología, Bioconstrucción, Energías Renovables, Educación Popular, Economía Social y el Desarrollo Rural Sostenible, su página electrónica actual es (https://multiversidad.es). Con sedes en Alboraya (Valencia) y Tegueste, (Tenerife), tiene entre otros fines, i) la investigación y desarrollo de tecnologías apropiadas en las materias objetos de la Fundación, así como su divulgación; ii) la difusión de los valores ecológico-sociales, culturales, etnológicos de la sociedad rural y de la economía social; iii) contribuir al desarrollo sostenible territorial respetuoso con el entorno y la protección y recuperación de espacios naturales y protegidos; iv) evitar la desertización y frenar el avance de la erosión mediante técnicas agroecológicas de recuperación de suelos; v) actuar como centro de información y documentación sobre técnicas agrarias enmarcadas dentro del enfoque Agroecológico; vi) servir de foro de discusión, reflexión y análisis sobre la sostenibilidad de los procesos agrarios; y vii) estudiar los impactos de los problemas de contaminación ambiental sobre los cultivos, así como la interacción de estos factores con plagas y enfermedades.

Objetivo que se alcanza con la adopción de prácticas de gestión forestal que garanticen el suministro a largo plazo de madera para todos los usos, al mismo tiempo que se mantiene y mejora el hábitat natural, la biodiversidad y otros aspectos ecológicos. Para recibir una certificación al respecto es necesaria la adhesión voluntaria a una norma. Las más conocidas son el Programa para el Reconocimiento de Sistemas de Certificación Forestal (PEFC) y los principios del Consejo de Administración Forestal (FSC). La evaluación del estado de salud de los bosques en Europa se realiza, entre otros medios, a través del seguimiento del follaje de su arbolado. La defoliación anormal es un indicador de la salud y vitalidad de los árboles que está relacionado con factores muy diversos, tales como condiciones climáticas y fenómenos meteorológicos extremos, así como la contaminación atmosférica y las plagas. Los bosques pueden presentar daños provocados por agentes bióticos, abióticos y antrópicos (humanos). Los agentes bióticos y abióticos suelen ser (con la excepción de las especies exóticas invasoras) componentes naturales de los procesos ecológicos de estos ecosistemas. Su desarrollo descontrolado puede ocasionar perjuicios considerables en las masas forestales, constituyendo una amenaza para la gestión forestal sostenible. El fuego es un elemento natural que juega un importante papel en los procesos de regeneración, selección, adaptación y evolución de los ecosistemas naturales. Sin embargo, los incendios forestales pueden provocar consecuencias negativas en vegetación y fauna, así como contribuir a los procesos de desertificación, pérdida del suelo y suministro de agua, además de producir pérdidas de vidas humanas y bienes materiales.

Aparato muy común para la preparación de extractos de muestras biológicas de suelo o de tejidos vegetales, de extractos previa a análisis serológicos, moleculares o de amplificación molecular, estudio de proteínas, ácidos nucleicos o de agentes patógenos, células, metabolismo celular, etc. Estos aparatos tratan de disgregar los tejidos y romper las células, dañando lo menos posible la membrana plasmática. La preparación de la muestra puede generarse en el homogeneizador mediante fuerzas de cizalladura producidas por líquidos (homogeneizadores de vástago), mediante fuerzas de cizalladura producidas por sólidos (mortero y mazo, bolsas de malla fina con homogeneizadores de rodamientos manuales o incluso semiautomáticos como el extractor Tecan, o con bolsas de malla gruesa con martillo, prensa de rodillos lisos o acanalados, extractor de Gugerli, molinos de bolas, molinillos de aspas, batidoras-trituradoras), mediante cavitación gaseosa (bomba de nitrógeno, generadores de ultrasonidos) o mediante medios químicos o bioquímicos (medio hipotónico, rotura celular con lisozima). Es preciso utilizar sistemas que minimicen la contaminación cruzada, la generación de aerosoles y que reduzcan el ruido, como la preparación de homogeneizados en bolsas de plástico, que pueden ser estériles y provistas de malla fina filtrante o gruesa que ayude en la trituración de material leñoso. Los más utilizados para análisis serológicos y de hibridación molecular son los homogeneizadores de vástago, extractor de Gugerli (para patata o papa) y los de rodamientos en bolsas. Para análisis por amplificación molecular los más usuales son los homogeneizadores Homex 6 y el homogeneizador manual de rodamientos, ambos en bolsas. Los robots capaces de homogeneizar gran número de muestras de tejidos vegetales, manteniendo los extractos a baja temperatura y extrayendo el ADN, previo a la amplificación por PCR en tiempo real, son cada vez más usados por ser muy útiles para el análisis de gran número de muestras de prospecciones masivas.

Instrumento para realizar mezclas u homogeneizaciones en laboratorio. Funcionan por la acción de palas gemelas oscilantes que alternativamente actúan sobre la muestra contenida en el interior de una bolsa de plástico estéril. La velocidad y tiempo de acción de las palas es regulable. No generan contaminación cruzada entre muestras ni sobrecalientan las mismas. Son útiles para mezcla y disolución de productos en líquidos, lavado y preparación de muestras de suelo, lavados superficiales, enjuagues, preparación de muestras para inmunofluorescencia o PCR en tiempo real para hongos y bacterias. No desgarran ni trituran el material vegetal, especialmente si es leñoso, por lo que no generan homogenizados o extractos brutos recomendables para detección de virus o patógenos vasculares. El más conocido es el modelo Stomacher de la marca Seward, nombre por el que a menudo se conocen este tipo de homogeneizadores.

Instrumento que consta de un vástago metálico sobre el que gira, uno concéntrico provisto de dientes de acero o cuchillas a altas revoluciones (regulable hasta 5.000 rpm). Tienen la misión de homogeneizar y dispersar. Los trozos sólidos de material vegetal, previamente seccionado por fuerzas de cizalladura en el seno de un líquido (tampón apropiado de extracción), van disminuyendo de tamaño conforme gira el vástago durante unos segundos, hasta constituir un extracto. Existen disponibles vástagos de diferente diámetro aptos para ser introducidos en tubos de ensayo, vasos de precipitado o matraces. Son muy utilizados para preparar extractos utilizables en técnicas de detección ELISA. La contaminación cruzada que pueden generar entre muestras, se reduce lavando el vástago entre ellas con agua y durante unos segundos a altas revoluciones en agua o tampón de extracción con hielo picado seguido de un somero secado del vástago con papel absorbente. Son muy populares los modelos de homogeneizadores dispersadores de Polytron (Kinematika), Ultra Turrax o Wiggenhauser.

Marca comercial de instrumento de laboratorio que permite la realización casi automática de homogeneizados de material vegetal suculento (hojas, flores, peladuras de frutos, raicillas, o brotes herbáceos) en bolsas de plástico de preparación de extractos. Permite el tratamiento consecutivo de varias bolsas con muestra (hasta ocho) pudiendo regular el tiempo de funcionamiento en cada muestra y la velocidad de giro de los rodillos de rodamientos. Un operador puede procesar unas 250 muestras por hora, utilizables para técnicas ELISA, de hibridación molecular o de amplificación molecular por PCR. El sistema evita la contaminación cruzada entre muestras.

Aparato sencillo que posee un cojinete de rodamiento de bolas de acero en la base y un soporte que permite hacerlo girar presionando manualmente sobre una bolsa de plástico de preparación de extractos. Se han impuesto por ser muy económicos y evitar la contaminación cruzada entre muestras, aunque solo se pueden emplear para material vegetal suculento.

Especie fúngica que normalmente vive en el interior de la planta. Aparecen frecuentemente, con lento crecimiento, en cultivo de tejidos vegetales in vitro pues sobreviven a la descontaminación superficial que se suele efectuar del explanto.

1. Acrónimo de Instituto de Ciencias Agrarias con sede en Madrid, creado en 2004 para dotar al Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC) de España de un centro de excelencia en la investigación agroambiental. Su estructura científica está basada en tres grandes líneas de investigación complementarias: contaminación ambiental, sanidad vegetal e interacciones beneficiosas plantas-microorganismos. Dispone de grupos de investigación en: i) bioplaguicidas, biotecnología y química de productos naturales; ii) insectos vectores de patógenos de plantas; iii) interacciones beneficiosas planta-microorganismo; iv) interacciones de las plantas con insectos y bioparásitos en agroecosistemas; y v) tecnologías geoespaciales y de precisión para una agricultura sostenible. 2. (Colombian Agricultural Institute). Acrónimo de Instituto Colombiano Agropecuario (http://www.ica.gob.co). Entidad pública nacional, con personalidad jurídica, autonomía administrativa y patrimonio independiente, perteneciente al Sistema Nacional de Competitividad, Ciencia, Tecnología e Innovación (SNCCTI) y adscrito al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Se creó en 1962 para coordinar e intensificar las labores de investigación, enseñanza y extensión de las ciencias agropecuarias, para el mejor y más armónico desarrollo de todas las actividades del sector y especialmente para facilitar la reforma social agraria. Su sede principal está en la ciudad de Bogotá D. C. y cuenta con 32 gerencias seccionales, una por departamento. Tiene la responsabilidad de trabajar por el control de la sanidad agropecuaria del país aplicando las medidas sanitarias y fitosanitarias, con la orientación de acciones mediante los procesos de vigilancia epidemiológica, evaluación, gestión y comunicación del riesgo en la producción primaria. Lidera el desarrollo de acuerdos y negociaciones internacionales en materia fitosanitaria y zoosanitaria para la apertura de los mercados a los productos del campo colombiano.

Parámetros cuantitativos derivados de la composición y estructura de las comunidades de nematodos en el suelo o en las raíces de las plantas. Se utilizan como bioindicadores de la calidad del suelo, el grado de perturbación o madurez del ecosistema y el impacto de las prácticas agrícolas. Entre los más empleados destacan el índice de madurez (MI), índice de estructura (SI), índice de enriquecimiento (EI) e índice de canalización (CI). Estos índices, en fitopatología y ecología de suelos, son parámetros cuantitativos derivados de la comunidad de nematodos presentes en una muestra de suelo o raíces, que permiten evaluar: i) la estructura de la comunidad nematológica (diversidad, abundancia relativa de grupos funcionales); ii) la salud del suelo (grado de perturbación, madurez, resiliencia del ecosistema); y iii) la calidad ambiental y el estado de los cultivos (impacto de prácticas agrícolas, fertilización, uso de plaguicidas, contaminación, salinidad, etc.).

1. Contaminación de un suelo, sustrato, superficie (de una planta, sus órganos o útil de trabajo) sin infección ni parasitismo, por diversos microorganismos como hongos, oomicetos, bacterias, virus o viroides. No debe confundirse con infección por microorganismos, que se aplica solo a plantas o animales vivos enfermos con síntomas. 2. Contener o estar cubierto, un área o campo, con gran cantidad de individuos de una misma especie de plagas, especialmente insectos, ácaros, nematodos, malas hierbas, moluscos o roedores.

Estructura de mayor o menor volumen cubierta de vidrio (frecuentemente armado contra granizo y roturas accidentales) o plástico y en ocasiones con dispositivos sombreadores ocasionales y protección antivectores. Suele poseer bancadas de cultivo elevadas. En el caso de invernaderos con nivel de contención biológica P2 o P3, dispone de filtros para renovar la atmósfera interna y evacuar gases y de sistemas de eliminación y tratamiento de agua de riego sin riesgos de contaminación exterior. Se utiliza para el cultivo o protección de plantas en invierno y para la producción de cultivos fuera de estación, también para observar la expresión de síntomas en plantas indicadoras, experimentos de inoculación y la realización de ensayos de transmisión experimental con vectores procedentes de insectarios. Suele incluir instalaciones de seguridad como doble puerta, protección con malla antivectores, calefacción, iluminación complementaria, refrigeración, riego, nebulización, presión negativa, etc., para controlar las condiciones ambientales a voluntad e incluso simular condiciones concretas que favorezcan el desarrollo de las plantas o de las enfermedades, si están inoculadas.

Denominación común de la enfermedad causada por Bipolaris sorokiniana (sin. Drechslera sorokiniana y Helminthosporium sativum), en cereales, principalmente en trigo y cebada, cultivados generalmente en ambientes templado-cálidos y húmedos, pero se ha diseminado también a zonas de primaveras cálidas donde se cultiva el trigo harinero. Los típicos síntomas de la enfermedad son manchas oscuras de color marrón, con contornos no definidos y forma oval o redondeada a nivel de coleoptilo, plúmula, hojas y vainas. Esta enfermedad puede aparecer en el cereal desde el estado de plántula en adelante. En raíces y en la corona del tallo se observan coloraciones oscuras, que se necrosan entre el nudo de ahijado y la semilla. Como consecuencia, las plantas presentan clorosis o amarilleos y menor crecimiento y capacidad de ahijado, pudiendo llegar la planta a secarse. También puede afectar al grano, lo que provoca un menor rendimiento de cosecha. La principal fuente de inóculo son semillas infectadas y restos de cultivo anterior (voluntarios) afectados. La contaminación vía aérea es muy limitada por presentar esporas grandes y pesadas. Presente en España.

Aquella desechable que proporciona protección individual de nariz y boca frente a aerosoles acuosos y aceitosos, humo y partículas finas durante el trabajo, pero no contra el vapor y gas. Su uso es obligatorio en los entornos de trabajo que excedan la concentración máxima de trabajo (MAK) o concentración máxima de polvo, partículas, humo y aerosoles en el aire inhalado que sería dañino para la salud. En caso de superar estos límites de concentración máxima, el uso de máscaras respiratorias es necesario. Su función de protección se ajusta a la norma UE EN 149. Este tipo de máscara está compuesto de diversos materiales de filtración y se divide en tres clases de protección: FFP1, FFP2 y FFP3. La FFP1 proporciona protección para tipos atóxicos y no fibrogénicos de polvo. La fuga total (penetración del filtro y fugas en la boca y la zona de la nariz) puede ascender a un máximo del 25 %; este tipo de máscara se puede aplicar en entornos en los que se exceda MAK cuatro veces a lo sumo. La FFP2 proporciona protección frente a fluidos nocivos de polvo, humo y aerosoles. La fuga total puede ascender a un máximo del 11 %, la máxima concentración admisible de partículas es como mucho diez veces el valor de MAK. La FFP3 proporciona protección frente a los entornos de trabajo en los que pueda haber tóxicos venenosos, partículas fibrogénicas de polvo o aerosoles. Estas mascarillas pueden ser usadas siempre y cuando las medidas máximas de transgresión o concentración en el lugar de trabajo no superen el valor específico de la industria multiplicado por cuatro. En laboratorio, construcción o en la industria alimentaria se suelen utilizar este tipo de mascarillas. La clase de protección FFP2 (mascarillas de ultra protección) se utilizan en entornos de trabajo en los que las partículas nocivas y mutagénicas se pueden encontrar en el aire. Las mascarillas de esta categoría deberán impedir el paso de partículas de hasta 0,6 m y se pueden utilizar en entornos en los que no llegue a superarse hasta un máximo de diez veces el valor de la concentración máxima de trabajo (MAK). Lo mismo ocurre con el valor TRK (concentración de referencia técnica). Estas mascarillas de protección se usan a menudo en la industria metalúrgica y la minería o en trabajos de laboratorio que generen aerosoles, niebla o humo que pueda afectar gravemente a las vías respiratorias, aunque sea a largo plazo. Las mascarillas FFP3 ofrecen la máxima protección contra la contaminación del aire que se respira. La fuga total puede ascender a un máximo del 5 % y deben filtrar el 99 % de todas las partículas que miden hasta 0,6 m. Este tipo de máscara también filtra las partículas venenosas, oncogénicas y radiactivas. Se utilizan en entornos de trabajo que transgredan hasta como mucho treinta veces los valores MAK y TRK. A menudo se utilizan en la industria química y en casos muy específicos en laboratorio.

Aquella protectora que puede ser de varias clases, según el riesgo a evitar. La clase FFP1 está indicada para los entornos de trabajo en el que no se esperan ni los tipos tóxico venenosos, ni partículas fibrogénicas de polvo o aerosoles. Estas mascarillas pueden ser usadas siempre y cuando las medidas máximas de transgresión o concentración en el lugar de trabajo no superen el valor específico de la industria multiplicado por cuatro. En laboratorio, construcción o en la industria alimentaria se suelen utilizar este tipo de mascarillas. La clase de protección FFP2 (mascarillas de ultraprotección) se utilizan en entornos de trabajo en los que las partículas nocivas y mutagénicas se pueden encontrar en el aire. Las mascarillas de esta categoría deberán impedir el paso de partículas de hasta 0,6 µm y se pueden utilizar en entornos en los que no llegue a superarse hasta un máximo de diez veces el valor de la concentración máxima de trabajo (MAK). Lo mismo ocurre con el valor TRK (concentración de referencia técnica). Estas mascarillas de protección se usan a menudo en la industria metalúrgica y la minería o en trabajos de laboratorio que generen aerosoles, niebla o humo que pueda afectar gravemente a las vías respiratorias, aunque sea a largo plazo. Las mascarillas FFP3 ofrecen la máxima protección contra la contaminación del aire que se respira. La fuga total puede ascender a un máximo del 5 % y deben filtrar el 99 % de todas las partículas que miden hasta 0,6 µm. Este tipo de máscara también filtra las partículas venenosas, oncogénicas y radiactivas. Se utilizan en entornos de trabajo que transgredan hasta como mucho treinta veces los valores MAK y TRK. A menudo se utilizan en la industria química y en casos muy específicos en laboratorio.

Código de barras de ADN/ARN que permite la identificación simultánea de muchos taxones dentro de la misma muestra. La principal diferencia entre el código de barras y el metacódigo de barras es que este último no se enfoca en un organismo específico, sino que tiene como objetivo determinar la composición de especies dentro de una muestra. Un código de barras consta de una región genética variable corta que es útil para la asignación taxonómica flanqueada por regiones genéticas altamente conservadas que se pueden usar para el diseño de cebadores. El procedimiento de codificación de metabarras, como la codificación de barras general, procede en orden a través de las etapas de extracción de ADN, amplificación por PCR, secuenciación y análisis de datos. Se utilizan diferentes genes dependiendo de si el objetivo es codificar en barras una sola especie o metabarcodificar varias especies. En este último caso, se utiliza un gen conservado y de amplia distribución (“universal”). La metabarcodificación no utiliza ADN/ARN de una sola especie como punto de partida, sino de varios organismos diferentes derivados de una muestra ambiental o a granel. Tiene aplicaciones obvias para el monitoreo de la diversidad en todos los hábitats y grupos taxonómicos, la reconstrucción de ecosistemas antiguos, la detección de especies invasoras, las respuestas a la contaminación y el monitoreo de la calidad del aire. Se trata de un método único que aún está en desarrollo y probablemente seguirá evolucionando durante algún tiempo a medida que la tecnología avance y los procedimientos se estandaricen. Este sistema supera el inconveniente del uso, para identificación, de especies previamente secuenciadas.

Mezcla que contiene todos los componentes necesarios para una reacción de amplificación molecular mediante PCR. Disponible comercialmente este producto está diseñado para disminuir tiempos en la preparación de la reacción de PCR y evitar contaminaciones en las etapas de pipeteo. Es una solución premezclada en agua destilada libre de ADNasas y que contiene ADN polimerasa Taq, dNTPs, MgCl2 y tampones de reacción en concentraciones óptimas para una amplificación eficiente de las dianas de ADN mediante PCR.

Instrumento de laboratorio utilizado para absorber y transferir pequeños volúmenes; las micropipetas disponibles comercialmente permiten manejar volúmenes desde 0,5 a 10 µL. Para menores volúmenes se suelen utilizar capilares y para mayores pipetas automáticas de 20 a 200 µL. Se utilizan en variadas técnicas analíticas y frecuentemente con puntas estériles provistas de filtro para evitar contaminaciones.

Acrónimo del inglés. En español, amplificación basada en secuencias de ácidos nucleicos. Método de amplificación isotérmica, que permite la amplificación exponencial de una determinada muestra de ADN o ARN, aunque está especialmente diseñada para la amplificación de ARN. Está basada en la actividad simultánea de tres enzimas para obtener una amplificación exponencial del ARN: transcriptasa reversa del virus de la mieloblastosis aviar (AMV), RNasa H y ARN polimerasa del bacteriófago T7. Las ventajas frente a los métodos basados en PCR o RT-PCR son su mayor rapidez, no requerir termociclador (ya que todo el proceso tiene lugar a 41 oC en un proceso isotérmico), alcanzar niveles de sensibilidad analítica similares a los de la PCR o RT-PCR en tiempo real y que los amplicones (ADNc) no suponen un riesgo de contaminación.

Condiciones bajo las cuales los agentes biológicos pueden comúnmente manipularse de forma segura. La Organización Mundial de la Salud (OMS) clasifica los microorganismos patógenos para el hombre y los animales en cuatro grupos de riesgo (1, 2, 3 y 4), pero no considera a los patógenos de plantas ni a sus vectores, aunque se puede adoptar para estos un criterio similar Cada grupo de riesgo es específicamente apropiado para las operaciones llevadas a cabo, las vías de transmisión documentadas o sospechadas de los agentes infecciosos, y la función o la actividad de la instalación. El director del laboratorio es la persona específica y principalmente responsable de evaluar los riesgos y de aplicar adecuadamente los niveles de bioseguridad recomendados. El trabajo con agentes conocidos debe realizarse con el nivel de bioseguridad recomendado, pero cuando se cuenta con información específica relacionada con la especial virulencia, la patogenicidad, la disponibilidad de tratamientos, u otros factores que han sido alterados significativamente, se deben efectuar prácticas más estrictas. Según la OMS el nivel de bioseguridad 1 o nivel básico es para cuando el riesgo individual y poblacional se considera escaso o nulo. Las prácticas, los equipos de seguridad, el diseño y la construcción de la instalación del nivel de bioseguridad 1 son adecuados para la educación o capacitación secundaria o universitaria, y para aquellas instalaciones en las que se trabaja con cepas definidas y caracterizadas de microorganismos viables, que no se conocen como causantes de enfermedad en humanos, animales o vegetales, en la que es únicamente recomendada una pileta para lavado de manos. El nivel de bioseguridad 2 es para cuando el riesgo individual es moderado y el poblacional bajo. Las prácticas, los equipos, el diseño y la construcción de instalaciones del nivel de bioseguridad 2 son aplicables a laboratorios educativos, de diagnóstico u otros laboratorios donde se trabaja con un amplio espectro de agentes de riesgo moderado que se encuentran presentes en la comunidad y que están asociados con enfermedades humanas, animales o vegetales. Los agentes patógenos manejados, tienen pocas posibilidades de entrañar un riesgo grave, pues existen medidas preventivas y terapéuticas eficaces y el riesgo de propagación es limitado. Con buenas técnicas microbiológicas, estos agentes se pueden manejar en forma segura en una bancada o mesa de trabajo, siempre que no se produzcan salpicaduras o aerosoles en cuyo caso se utilizará una cabina de seguridad biológica. Se deben utilizar barreras primarias, tales como mascarillas contra salpicaduras, protección facial, batas y guantes y contar con barreras secundarias, tales como pilas para lavado de manos e instalaciones de descontaminación de desechos a fin de reducir la contaminación potencial del medio ambiente. El nivel de bioseguridad o de contención 3 es para cuando el riesgo individual es elevado y el poblacional bajo. Indicado para patógenos que suelen provocar enfermedades humanas, animales o vegetales graves, pero que de ordinario no se propagan de un individuo a otro y existen medidas preventivas y terapéuticas eficaces para controlarlos. Las prácticas, equipos de seguridad y el diseño y la construcción de las instalaciones del nivel de bioseguridad 3 pueden aplicarse a instalaciones clínicas, de producción, investigación, educación o diagnóstico, donde se trabaja con agentes exóticos o indígenas con potencial de transmisión respiratoria o ambiental, y que pueden provocar una infección grave y potencialmente letal. Las manipulaciones de laboratorio se deben llevar a cabo en cabina de seguridad biológica u otros equipos cerrados. Las barreras secundarias para este nivel incluyen el acceso controlado al laboratorio y sistemas de ventilación que minimizan la liberación de aerosoles infecciosos, como lo es un gradiente de presión negativa que crea un flujo de aire dirigido al interior de la instalación y el tratamiento previo de efluentes. El personal debe ducharse preventivamente al salir y entonces emplear la ropa habitual que había sido depositada a la entrada. El nivel de bioseguridad 4 o de contención máxima está destinado para cuando el riesgo individual y poblacional es alto. Está destinado al manejo de patógenos que suelen provocar enfermedades graves en el ser humano o animales y que se transmiten de un individuo a otro, directa o indirectamente y para los que no existen medidas preventivas y terapéuticas eficaces para su control. Las prácticas, equipos de seguridad, y el diseño y la construcción de instalaciones del nivel de bioseguridad 4 son aplicables al trabajo con agentes peligrosos o tóxicos que representan un alto riesgo individual de enfermedades que ponen en peligro la vida, que pueden transmitirse a través de aerosoles y para las cuales no existen vacunas o terapias disponibles. El aislamiento completo del personal de laboratorio se logra principalmente con cabinas de máxima seguridad biológica (clase III) y con un traje de cuerpo entero, con provisión de aire y presión positiva. Por lo general, la instalación del este nivel 4 es un edificio separado o una zona totalmente aislada con sistemas de gestión de desechos y requisitos de ventilación especializados y complejos. Este nivel no es necesario para los patógenos de plantas conocidos.

Estado alotrópico, triatómico, del oxígeno de cuya acción resulta un gas (O3) muy oxidante que puede causar contaminación aérea. Se han descrito daños por ozono en numerosos cultivos. Los elevados niveles de concentración de ozono son responsables de síntomas foliares necróticos, reducción en el crecimiento de las plantas y en general disminución del rendimiento de cosechas, así como de un aumento de la sensibilidad de las plantas al estrés, incluso biótico frente a agentes patógenos. También se ha descrito que afecta a los insectos al disminuir la producción de hojas y su calidad o tamaño y provocar confusión entre los insectos polinizadores para alimentarse y en el momento de la ovoposición. Se genera por procesos naturales y por la actividad humana, básicamente cuando los gases procedentes de los tubos de escape de vehículos, chimeneas, procesos industriales de extracción de petróleo, gas y de otras fuentes, reaccionan en presencia de la luz solar. Su localización en niveles altos de la atmósfera reduce la entrada masiva de radiaciones ultravioleta del exterior.